西班牙免校准多光阱光镊

型号:
价格:请致电：010-67529703
品牌:

免校准、多光阱—专为细胞组织力学设计的光镊

市场上wei一将高速多个光陷阱控制与直接力光谱相结合的光捕获平台。光镊装置安装在科学倒置显微镜上，可根据您首选的显微镜配置进行定制，并可与转盘共焦、落射荧光或 TIRF显微镜等多种成像技术相结合。其灵活性、精确性和易用性允许从一开始就进行前所未有的细胞力学实验，即使对于非专家用户也是如此。该系统是一款高端仪器，提供最高质量的光学捕获和力传感技术， 能够对活细胞和组织进行前所未有的操作和机械刺激，同时以直接、绝对和非侵入的方式测量细胞力及其流变特性，所有这些都在科学实验室的典型预算范围内。

光捕获技术

基于声光转向技术，我们的光陷阱生成模块允许以 25 kHz 的频率同时生成和控制多达256 个光陷阱，比基于振镜的系统快一个数量级。光镊装置包括单频红外激光源（5W，1064nm）。我们直观且用户友好的 LightAce 控制软件将允许您单独手动控制每个光陷阱或对自动轨迹、周期性振荡和变形模式进行编程，并将它们同时应用于多个光陷阱。该系统允许记录细胞力学实验的视频，并与多个同步光阱的记录力和位置数据同步。

力谱技术

我们独特的基于光动量变化检测的直接力传感器是该仪器的核心。我们获得专利的独家力谱技术将允许您测量复杂介质中的光学捕获力，例如不规则物体上的活细胞和组织内部，并且远远超出力-距离曲线的线性区域，从而为前所未有的细胞力学实验打开了大门在体内条件下。最好的部分？无需校准即可独立于样品和介质特性来测量力！ 我们的直接力传感器将允许您同时测量多个陷阱 (256) 上的力，使用其力反馈回路执行力夹紧，精确控制样品平面上的激光照射功率并跟踪被捕获物体的位置。

在细胞力学和软物质物理中的应用

该系统是细胞力学和软物质物理研究人员的完美工具，使用微球、全细胞或内源性细胞结构作为探针来机械刺激和感测您的样品，提供多种应用：

• 单分子水平的机械感受器力
• 细胞膜系链拉动和变形。
• 主动流变学：细胞和生物组织的弹性、粘度和刚度。
• 细胞核机械 转导。
• 细胞间相互作用和粘附力。
• 体内和体外运动蛋白动力学。
• 微型游泳者和细菌细胞运动力。

可以在已有显微镜上升级配置起来，免校准、使用简洁方便、经济。

★可直接自动测量细胞内和组织环境中微粒的受力,自动化细胞力学研究流程
★免校准测量, te适合测量不规则颗粒受力
★多光阱捕获和同步测量（>256个光阱）
★可高精度探测溶液、细胞内和组织内微环境的粘弹性
★同时荧光成像
★光镊不需要荧光标定，减少人为干预
★探测力的方式为光子动量改变，所以适合测量复杂环境难以用传统方式校准的样品，以及不规则颗粒
★多光阱同步测量，可追踪多个光阱的受力；
★操作方便，点击屏幕即可设置光阱，拖动光阱捕获目标颗粒，减少用户的移动样品池的操作；
★有微流变的测量模块，适合探测细胞内和组织内微环境的粘弹性
★三维高精度力学测量与操控

典型应用：
世联博研(北京)科技有限公司专注细胞力学和3D生物打印服务，客服电话：400-650-8506
★1、细胞层次的力学检测:
1.1、单细胞膜的受力-形变
测量细胞膜的弹性，捕获手柄小球挤压和拉伸细胞膜，测量受力与形变量的关系。
可研究细胞膜的弹性与细胞骨架蛋白的关系等。
1.2、单细胞上配体-受体相互作用力检测
捕获手柄小球（修饰有相应抗体或者结合蛋白）接触细胞表面，当配体-受体结合后拉伸时，测量小球受到光阱的
力，量化配体-受体结合对的作用力大小。
可研究免疫细胞的te异性识别机制及细胞表面分子和抗体分子间的相互作用等。
1.3 、细胞-细胞相互作用检测
直接捕获细胞接触靶细胞，待细胞结合一定时间后拉伸细胞，可测量细胞-细胞相互作用的力；还可控制细胞受到te
定刺激；
可原位研究细胞膜表面配体-受体相互作用力大小，以及免疫突触形成等。
1.4 、单/多细胞的j化和迁移与应力刺激（包括单细胞应力加载培养）
可借助手柄小球在细胞局域上施加应力刺激，研究细胞的j化，以及细胞迁移与应力刺激的关系。

★2、分子层次的动力学te性:
2.1、DNA/RNA的动力学te性
将DNA/RNA通过偶联接到手柄小球上，光阱控制手柄小球拉伸生物大分子，可获得DNA的hairpin结构和RNA的stem
结构打开的力学特征，以及结合蛋白对其动力学te性的影响。
2.2、 蛋白质结构域的受力调控
将蛋白质通过巯基结合DNA末端，将手柄DNA链接到微球上，光阱拉伸微球，可研究蛋白质结构折叠和去折叠的力
学特征。
2.3、 马达蛋白的动力学te性
将马达蛋白分子偶联在微球上，通过光阱将微球定位到microtubule或actin骨架蛋白上，马达分子消耗ATP分子转化为
机械能，可研究分子马达的运动的动力学te性和多分子协同运动te性。

★3、多颗粒操纵和细胞分选:
3.1、多颗粒操纵
可自由操纵多个颗粒进行空间排列及运动探测。
3.2、te定细胞分离
可将目标细胞捕获移动到指定区域，便于分离细胞。

★4、粘弹性测量:
4.1、细胞内粘弹性
光阱捕获细胞内的囊泡，以囊泡的主动/被动运动反演微流变te性，获得粘性和弹性模量。
4.2、 组织微环境的粘弹性
捕获导入的微粒，探测微粒的主动/被动运动反演微流变te性，获得粘性和弹性的模量。采用多光阱同时测量，可鉴
别不同区域的粘弹性。

★5、刚度、硬度测量:

应用文献案例：

• •R. Meissner, N. Oliver and C.Denz. “Optical Force Sensing with Cylindrical Microcontainers“.Part. Part. Syst. Charact. 2018, 1800062.
• •F.Català, F. Marsà, M. Montes Usategui, A. Farré & E. Martín-Badosa. “Influence of experimental parameters on the laser heating of an optical trap“. Sci. Rep. 7, 16052; doi:10.1038/s41598-017-15904-6 (2017).
• •Català, F. et al. “Extending calibration-free force measurements to optically-trapped rod-shaped samples“. Sci. Rep. 7, 42960; doi: 10.1038/srep42960 (2017).
• •R. Bola, F. Català. M. Montes-Usategui, E. Martín-Badosa. “Optical tweezers for force measurements and rheological studies on biological samples”.15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• •Martín-Badosa, F. Català, J. Mas, M. Montes-Usategui, A. Farré, F. Marsà. “Force measurement in the manipulation of complex samples with holographic optical tweezers”15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• Derek Craig, Alison McDonald, Michael Mazilu, Helen Rendall, Frank Gunn-Moore, and Kishan Dholakia. “ Enhanced Optical Manipulation of Cells Using Antireflection Coated Microparticles”.ACS Photonics, 2 (10), pp 1403–1409, (2015).
• •Xing Ma, Anita Jannasch, Urban-Raphael Albrecht, Kersten Hahn, Albert Miguel-López, Erik Schäffer, and Samuel Sánchez. “Enzyme-Powered Hollow Mesoporous Janus Nanomotors”. Nano Lett., 15 (10), pp 7043–7050, (2015).
• •Michael A. Taylor, Muhammad Waleed, Alexander B. Stilgoe, Halina Rubinsztein-Dunlop and Warwick P. Bowen. “Enhanced optical trapping via structured scattering“. Nature Photonics 9,669–673 (2015)
• •Gregor Thalhammer, Lisa Obmascher, and Monika Ritsch-Marte, “Direct measurement of axial optical forces“.Optics Express, Vol. 23, Issue 5, pp. 6112-6129 (2015)
• •Y. Jun, S.K. Tripathy, B.R.J. Narayanareddy, M. K. Mattson-Hoss, S.P. Gross, “Calibration of Optical Tweezers for In Vivo Force Measurements: How do Different Approaches Compare?”. Biophysical Journal, V 107, 1474-1484 (2014).
• •A. Farré, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “The measurement of light momentum shines the path towards the cell”, Opt. Pur Apl. 47, 239-248 (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “A force measurement instrument for optical tweezers based on the detection of light momentum changes”, Proc. SPIE 9164, 916412 (2014).
• •J. Mas, A. Farré, J. Sancho-Parramon, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “Force measurements with optical tweezers inside living cells”,  Proc. SPIE 9164, 91640U (2014).
• •F. Català, F. Marsà, A. Farré, M. Montes-Usategui, and E. Martín-Badosa, “Momentum measurements with holographic optical tweezers for exploring force detection capabilities on irregular samples”, Proc. SPIE 9164, 91640A (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “Optimized back-focal-plane interferometry directly measures forces of optically trapped particles” Opt. Express 20, 12270-12291 (2012).