小鼠脏器组织淋巴细胞分离液
型号:null    产品货号： LTS1092P
价格:请致电：010-57128832,18610462672
品牌: 天津
试剂级别： 试剂级

【检验原理】 外周血中单个核细胞包括淋巴细胞和单核细胞等细胞，其体积、形态和密度与其他细胞不同，红细胞和白细胞等细胞密度较大，为 1.090 g/ml 左右，而淋巴细胞和单核细胞密度为 1.075～1.090 g/ml，血小板为 1.030～1.035 g/ml。为此，本公司将葡聚糖(***)和泛影酸葡甲胺按一定比例混合，调整比重、pH 值和渗透压，经过澄清及除菌过滤后制成一种密度在 1.077g/ml 并且近于等渗的溶液（分层液），经过密度梯度离心使一定密度的细胞按相应密度梯度分布，从而将各种血细胞加以分离。 【检验方法】 取新鲜抗凝血 1ml，与注射用生理盐水 1:1 混匀后，小心加于 2ml 的细胞分离液之液面上，以 400g 离心(半径 15cm 水平转子)20 分钟，此时离心管中由上至下细胞分四层。第一层为血浆层。第二层为环状乳白色淋巴细胞。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。收集第二层细胞放入含注射用生理盐水 4-5毫升的试管中，充分混匀后， 400g，离心 20 分钟。沉淀经反复洗 2 次即得所需细胞。(此方法效果较好，推荐使用) 【主要组成成份】 本品为带有乳光或微乳光的注射水溶液，主要组成成份是葡聚糖（***）与泛影酸葡甲胺。 【储存条件及有效期】 18-25℃避光保存，有效期 2 年。启封后置 4℃保存，有效期 1 周。本品为真空包装，未启封前置于 10℃ 以下易出现白色结晶，影响分离效果。 【适用仪器】  半径 15cm 水平转子离心机。 【样本要求】 本分离液要求血液为新鲜的抗凝血，血液收集时应无菌操作且在储存、处理和运输过程中避免冷冻和冷藏。 【参考值（参考范围）】收集淋巴细胞的纯度大于 80%。 【检验结果的解释】 由于各品牌离心机的性能不同，国内南北地区温度环境和四季的差异，可能影响分离效果，用户可以调节离心转数和离心的时间，摸索最佳的分离条件（具体分离条件各实验室自定）。【检验方法的局限性】  本试验要求，在正常大气压下，样本、分离液及分离环境温度为 20℃± 2℃。本分离液在低温时呈较高密度，在高温时呈较低密度。 【产品性能指标】 密度 1.077 ± 0.001g/ml pH 7.0-7.5 渗透压 280-340mOsmol/kg 400g，离心20 分钟www...tbdscience...com中国医学科学院生物医学工程研究所灏洋生物联合实验室监制内毒素 ＜0.06EU/ml 无菌 直接接种培养 14 天后培养基澄清澄明度及不溶性颗粒物 每 50ml 溶液中含 10μm 以上的不溶性微粒 20 粒以下，含 25μm 以上的不溶性微粒 5 粒以下【注意事项】 1. 启封后应置 4℃保存，避免微生物的污染。 2. 细胞分离液从冰箱取出后，不可立即使用，需待溶液温度升至室温时，摇匀后使用。 3. 整个分离过程中，温度应控制在 20℃± 2℃且在无菌环境下进行，避免微生物的污染，否则会影响分离质量。 【医疗器械注册证书编号】津食药监械（准）字2011第1400014号 【产品标准编号】 YZB/津 1595-2011 【参考文献】 1 郑德先，吴克复，褚建新.现代实验血液学研究方法与技术.北京医科大学中国协和医科大学联合出版社，1999 2 鄂征.组织培养.北京出版社，1995 3 朱立平，陈学清.免疫学常用实验方法.人民军医出版社，2000

耸崩胄墓苤杏缮现料孪赴治牟恪５谝徊悖晃恪５诙悖唬唬晃纷慈榘咨� ；为环状乳白色单个核细胞层。。。。第三层；为透明分离液层。第四层；为红细胞层。收集第二层细胞放入含 10ml细胞洗涤液（Cat#：2010X1118）的试管中，充分混匀后，以 500g（约 1800 转/分）离心 20分钟，弃去上清留沉淀细胞重新悬起。重复洗涤 2 次即得所需细胞。C. 大量分离 C. 大量分离 I-使用 20ml 新鲜抗凝血（分离图例见图例 （分离图例见图例 2）：：a. 取新鲜抗凝血 20ml 以 200g（约 1100 转/分）离心 20 分钟弃去血浆； b. 向弃去血浆的血细胞 弃去血浆的血细胞中加入全血及组织稀释液（Cat#：2010C1119）12ml 小心混匀； c. 将混合液小心叠加于细胞分离液之液面上（混合液：：：分离液 ：=2==：=：：：1）； d. 以 600g（约 2000 转/分）离心 15 分钟(半径 15cm 水平转子)； 此时离心管中由上至下细胞分为四层。第一层；为血浆层。第二层；；；为环状乳白色 ；为环状乳白色单个核细胞层。。。。第三层；为透明分离液层。第四层；为红细胞层。收集第二层细胞放入含 20ml细胞洗涤液（Cat#：2010X1118）的试管中，充分混匀后，以 500g（约 1800 转/分）离心 20分钟，弃去上清留沉淀细胞重新悬起。重复洗涤 2 次即得所需细胞。 D. 大量分离 D. 大量分离 II-使用 50ml 新鲜抗凝血（分离图例见图例 （分离图例见图例 3）：： a. 取新鲜抗凝血50ml 与 HES 50ml HES----TBD550 液 1:1 混合后再与 1 份注射用生理盐水混匀 20℃-30℃静置 20-30 分钟。吸取混浊的上清液备用，弃去底部红细胞。 b. 将步骤 1 中留取的上清液以 200g（约 1100 转/分）离心 20 分钟弃去上清保留沉淀细胞； c. 向沉淀的细胞中加入全血及组织稀释液（Cat#：2010C1119）20ml 小心混匀； d. 将混合液小心叠加于细胞分离液之液面上（混合液：：：分离液 ：=2==：=：：：1）； e. 以 600g（约 2000 转/分）离心 15 分钟(半径 15cm 水平转子)； 此时离心管中由上至下细胞分为四层。第一层；为血浆层。第二层；；；为环状乳白色 ；为环状乳白色单个核细胞层。。。。第三层；为透明分离液层。第四层；为红细胞层。收集第二层细胞放入含 20ml细胞洗涤液（Cat#：2010X1118）的试管中，充分混匀后，以 500g（约 1800 转/分）离心 20分钟，弃去上清留沉淀细胞重新悬起。重复洗涤 2 次即得所需细胞。 注：：：：提取率约为 80%。。。。  血液（人）中各细胞含量参考值 中各细胞含量参考值：：： ：男：4.0-5.5×1012/L(400-550 万个/mm3) 女：3.5-5.0×1012/L(350-500 万个/mm3 红细胞 ) 新生儿：6.0-7.0×1012/L(600-700 万个/mm3) ***：4.0-10.0×109/L(4000-10000 个/mm3) 白细胞 新生儿：15.0-20.0×109/L（15000-20000 个/mm3) 血小板 100-300×109/L（10 万-30 万个/mm3) 名称 占白细胞总数百分比 占白细胞总数百分比嗜中性粒细胞 30%-70% 嗜酸性粒细胞 0.5%-5% 嗜碱性粒细胞 0%-1% 淋巴细胞 20%-40% 白细胞分类计数单核细胞 3%-8% 分离图例 3抗凝血 50ml 与 HES-TBD550 1：1 混合后再与 1 份注射用生理盐水混匀 20℃-30℃静置 20-30 分钟8.2 组织分离液使用说明及图例 8.2 组织分离液使用说明及图例A．取组织匀浆单细胞悬液（细胞浓度为 2×108-1×109个/ml，具体制备方法参照“10.组织单细胞悬液的制备”）2ml，小心加于 2ml 细胞分离液之液面上； B．以 400g（约 1500 转/分）离心 15 分钟(半径 15cm 水平转子)； 此时离心管中由上至下细胞分为四层。第一层；为胎牛血清液层。第二层；；；为环状乳白色 ；为环状乳白色单个核细胞层。。。第三层；为透明分离液层。第四层；为红细胞层。收集第二层细胞放入含 4-5ml细胞洗涤液（Cat#：2010X1118）的试管中，充分混匀后，以 500g（约 1800 转/分）离心 20分钟，弃去上清留沉淀细胞重新悬起。重复洗涤 2 次即得所需细胞。 9. HES. . HES-TBD550 使用说明HES 是从支链淀粉衍生出来的，是富含淀粉的复合物，其生理和化学特性主要由羟乙已基取代度即取代级、平均分子量决定。大量实验表明平均分子量越大对红细胞的凝集作用越强，有效提高红细胞的沉降速度，从而使红细胞与其它细胞分离。故而，使用 HES-TBD550（羟乙已基淀粉 550）沉淀法是一种高效的细胞分离方法。 间充质干细胞(mesenchymal stem cells ,MSCs) 是指一群可向成骨细胞、成脂肪细胞、骨髓基质细胞、肝脏细胞、心肌细胞和神经细胞等多种细胞分化的多潜能组织干细胞,是在细胞治疗、基因治疗中有效发挥作用的理想工程细胞。MSCs 不仅存在于骨髓,也可从脐血、外周血中以及脂肪组织、肌肉、胎儿器官、大脑、牙齿中分离。UCB - MSCs 的分离、筛选、增殖、分化与脐血样本的选择、培养基的差异以及分离、扩增分化过程中操作技术等多种因素有关。目前用于 UCB - MSCs 分离的方法有:贴壁筛选法、密度梯度离心法、流式细胞仪法和免疫磁珠法。流式细胞仪法对细胞损伤较大，免疫磁珠法价格相对较贵且由于抗原抗体反应也容易改变细胞原有特性，而 HES-TBD550（羟乙已基淀粉 550）联合密度梯度离心法常与贴壁筛选法结合使用,可提高所得 UCB - MSCs 的纯度，目前研究多采用此法。国内不少学者采用羟乙已基淀粉沉淀红细胞，然后再进行离心分离单个核细胞，也取得不错结果。实验证明采用随机数字表法，将每份脐血随机分入两个不同处理组，从而将脐血样本的个体差异减小到最小程度。结果证实，HES-TBD550（羟乙已基淀粉 550）联合密度梯度离心法获得的有核细胞数量明显多于 FICOLL 密度梯度离心法。本实验采用的羟乙已基淀粉商品名为HES-TBD550（羟乙已基淀粉 550），克分子渗透压为 308mosm／L?胶体渗透压为 68／36 mmHg,可影响红细胞集聚性沉降率。红细胞集聚是可递性桥接结构形成的结果，由大的 HES-TBD550（羟乙已基淀粉 550）分子处在红细胞之间联接而成。HES-TBD550（羟乙已基淀粉 550）同时还阻碍白细胞和内皮细胞的黏附，并使平均血小板容积呈现微弱地降低，从而有轻度抑制血小板集聚的功能。脐血经 HES-TBD550（羟乙已基淀粉 550）处理后，可使红细胞沉积至试管底，对其它主要成分包括干细胞无影响。经这样处理后，实验时间相对较短（平均为 1.5 h），步骤相对较少，细胞污染几率小，从而使细胞数损失减少。结论证明，与相应的干细胞分离液联合分离使用羟乙已基淀粉沉淀法是一种高效的脐血干细胞分离方法。 10.. . . 组织单细胞悬液的制备 组织单细胞悬液的制备注：：：：A.. .. 本说明只提供机械匀浆制备单细胞悬液的方法 本说明只提供机械匀浆制备单细胞悬液的方法，，，酶消化法由于各实验室选取的消 ，酶消化法由于各实验室选取的消化酶种类各不相同，，，，请各实验室自行选择进行试验B.. .. 全过程及所需试剂要求无菌环境 全过程及所需试剂要求无菌环境。。。剪碎法：：：将组织块放入平皿后 ： ，加入少量组织匀浆液及 20%胎牛血清；用眼科剪将组织剪至匀浆状，加入 5ml 组织匀浆液及 20%胎牛血清；用吸管吸取组织匀浆，用 100 目不锈钢滤网(另购)过滤到试管内；离心沉淀1500转/分×3 min，再用细胞洗涤液清洗3次，每次以500rpm短时低速离心除去细胞碎片，以 200 目不锈钢滤网（另购）过滤去细胞团块。作细胞计数并调整细胞浓度为（2～5）×107个/ml。常温下放置, 待测细胞的活力。分离前用 20%胎牛血清或全血及组织稀释液悬起细胞浓度为 2×108-1×109个/ml 的单细胞悬液备用。 匀浆器法：用眼科剪将组织剪成小块；放入 70ml 组织研磨器内，加入 2ml 组织匀浆液及 20%胎牛血清；缓慢转动研棒，研磨至匀浆；用 5ml 组织匀浆液及 20%胎牛血清冲洗研器；收集细胞悬液，经 200 目不锈钢滤网（另购）过滤；离心沉淀 800rpm×2min ，再用细胞洗涤液洗 3 次，离心沉淀。作细胞计数并调整细胞浓度为（2～5）×107个/ml。常温下放置, 待测细胞的活力。分离前用 20%胎牛血清或全血及组织稀释液悬起细胞浓度为 2×108-1×109 个/ml 的单细胞悬液备用。 细胞计数方法: 细胞计数法是用来计数细胞悬液中细胞数量的一种方法。一般利用计数板（血球计数板）进行。既可用于分离（散）细胞培养接种前计数所制备的细胞悬液中的细胞数量，也可用于对培养物的细胞数量进行计数。不论计数的对象如何，均须制备分散的细胞悬液。 计数与计算过程1）、在细胞计数板中央放置计数专用的盖玻片。 2）、用玻璃虹吸管吸取细胞，让虹吸管在盖玻片上或下侧的计数板凹处流出悬液，至盖玻片被液体充满为止。 3）、置显微镜下计数四角大方格内的细胞总数。对于压线的细胞只计数在上线和左线者，对于细胞团按单个细胞计数。 4）、按下式计数细胞悬液的密度： 细胞密度＝（4 个大格细胞总数/4）×104个/ml×稀释倍数公式中乘以 104因为计数板中每一个大格的体积为： 1.0mm（长）×1.0mm（宽）×0.1mm（高）＝0.1mm3 而 1ml＝1000mm3细胞计数要点：：： ：A． 进行细胞计数时，要求悬液中细胞数目不低于 104个/ml，如果细胞数目很少要进行离心再悬浮于少量培养液中；显微镜下计数时，遇到 2 个以上细胞组成的细胞团，应按单个细胞计算。如果细胞团>10％，说明细胞分散不充分; 或细胞数<200 个/10mm2或>500 个/10 mm2 时，说明稀释不当，需重新制备细胞悬液。 B． 要求细胞悬液中的细胞分散良好，否则影响计数准确性。 C． 取样计数前，应充分混匀细胞悬液，尤其是多次取样计数时更要注意每次取样都要混匀，以求计数准确； D． 数细胞的原则是只数完整的细胞，若细胞聚集成团时，只按照一个细胞计算。如果细胞压在格线上时，则只计上线，不计下线，只计左线，不计右线。 E． 操作时，注意盖玻片下不能有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中，否则要重新计数。 初学者易犯的错误：：： ：A． 计数前未将待测悬液吹打均匀。 B． 滴入细胞悬液时盖玻片下出现气泡。 C． 滴入悬液时的量太多，至使细胞悬液流入旁边的槽中。