英文名称： Annexin V,FITC Apoptosis Detection Kit
试剂级别： 试剂级
细胞凋亡是指为维持有机体内环境稳定，由基因控制的细胞自主的有序的死亡。正常情况下，任何细胞在形成过程中发生的异常都会通过凋亡消除。例如，体内的癌细胞增长为肿瘤的过程会受细胞凋亡的引导而被抑制。然而，在抑癌基因p53出现问题时，凋亡就不会诱导发生，从而导致癌细胞的不断增长。
细胞凋亡可以通过细胞形态的变化或生物化学的变化来检测。目前常用的指标有caspase活性变化、DNA碎片、***脂酰丝氨酸的外翻等。
Annexin V染色的细胞可以用于检测细胞凋亡早期的细胞膜变化。在细胞凋亡早期，膜***脂酰丝氨酸由脂膜内侧翻向外侧。
Annexin V是一种Ca离子依赖性***脂结合蛋白，可以与***脂酰丝氨酸特异结合。用绿色荧光FITC标记的Annexin V通过流式细胞仪或荧光显微镜可以检测到细胞凋亡的发生。***化丙***(Propidium Iodide, PI)是一种核酸染料，PI只能透过凋亡晚期和死细胞的细胞膜，因此Annexin V和PI结合使用，可以区分凋亡早晚期的细胞及死细胞。
产品名称 货号 规格 储存条件 运输条件
Annexin V,FITC结合物 AD01-02 20次×1 0-5℃，避光(切勿冻存) 室温
PI Solution AD02-05 50次×1 0-5℃，避光(切勿冻存) 室温
Annexin V Binding Buffer AD03-05 50次×1 0-5℃，避光(切勿冻存) 室温
*注：规格中的每“次”是以细胞浓度1×106 cells/ml计算
Annexin V,FITC结合物 AD01-02 20次×1 0-5℃，避光(切勿冻存) 室温
PI Solution AD02-05 50次×1 0-5℃，避光(切勿冻存) 室温
Annexin V Binding Buffer AD03-05 50次×1 0-5℃，避光(切勿冻存) 室温
*注：规格中的每“次”是以细胞浓度1×106 cells/ml计算
所需的设备和材料
-合适量程的移液枪 -样品和诱导剂
-细胞培养用6，12，24，96孔板 -PBS、去离子水
-流式细胞仪或荧光显微镜。*最大激发/发射波长Annexin V,FITC:494 nm/518 nm; PI:535 nm/617 nm
-细胞培养用6，12，24，96孔板 -PBS、去离子水
-流式细胞仪或荧光显微镜。*最大激发/发射波长Annexin V,FITC:494 nm/518 nm; PI:535 nm/617 nm
溶液制备
1xAnnexin V Binding solution：用蒸馏水稀释Annexin V Binding Buffer10倍。
1xAnnexin V Binding solution：用蒸馏水稀释Annexin V Binding Buffer10倍。
稳定性
本试剂盒在适合的条件下可以保存6个月。
本试剂盒在适合的条件下可以保存6个月。
操作流程
-悬浮细胞的流式细胞仪、荧光显微镜操作流程
诱导凋亡的操作步骤
1.制备细胞（Jurkat cell）悬液（1×106 cells/ml）
2.加入终浓度为1 μg/ml的凋亡诱导剂（Staurosuporine）
3.在37℃下培养3.5 h。* Staurosuporine用于诱导Jurkat cell凋亡。最佳诱导条件请根据实验的细胞类型与诱导剂调整。
Annexin V染色操作步骤
1.将细胞悬液转移到离心管中，1,000 rpm离心3 min，取出上清液。
2.加入PBS，1,000 rpm离心 3 min，去除上清液。再重复本步操作一次。
3.用之前准备好的1×Annexin V Binding Solution制备细胞终浓度为1×106 cells/ml的细胞悬液。
4.取100 μl步骤3中制备的细胞悬液，加入到一个新的tube中。
5.向细胞悬液中加入5 μl Annexin V,FITC结合物，再加入5 μl PI Solution。
6.室温下避光培养15 min。
7.加入400 μl 1×Annexin V Binding Solution。
8.流式细胞仪检测：加样到流式细胞仪检测。
荧光显微镜：将细胞悬液滴到玻片上，置于显微镜上用合适的滤光片检测。
-悬浮细胞的流式细胞仪、荧光显微镜操作流程
诱导凋亡的操作步骤
1.制备细胞（Jurkat cell）悬液（1×106 cells/ml）
2.加入终浓度为1 μg/ml的凋亡诱导剂（Staurosuporine）
3.在37℃下培养3.5 h。* Staurosuporine用于诱导Jurkat cell凋亡。最佳诱导条件请根据实验的细胞类型与诱导剂调整。
Annexin V染色操作步骤
1.将细胞悬液转移到离心管中，1,000 rpm离心3 min，取出上清液。
2.加入PBS，1,000 rpm离心 3 min，去除上清液。再重复本步操作一次。
3.用之前准备好的1×Annexin V Binding Solution制备细胞终浓度为1×106 cells/ml的细胞悬液。
4.取100 μl步骤3中制备的细胞悬液，加入到一个新的tube中。
5.向细胞悬液中加入5 μl Annexin V,FITC结合物，再加入5 μl PI Solution。
6.室温下避光培养15 min。
7.加入400 μl 1×Annexin V Binding Solution。
8.流式细胞仪检测：加样到流式细胞仪检测。
荧光显微镜：将细胞悬液滴到玻片上，置于显微镜上用合适的滤光片检测。
-贴壁细胞的流式细胞仪、荧光显微镜操作流程
诱导凋亡的操作步骤
1.制备细胞（Caco-2）悬液（1×106 cells/ml）
将细胞悬液接种到培养皿或者培养板中。
2.在5% CO2培养箱中37℃预培养。
3.加入终浓度为25 μmol/ml的凋亡诱导剂（Cisplatin）
4.37℃培养4 days。 * Cisplatin用于诱导Caco-2 cell凋亡。最佳的诱导条件请根据实验的细胞类型与诱导剂调整。
Annexin V染色操作步骤
1.弃去培养皿或培养板中的上清液。
2.用PBS洗细胞2次。
3.用胰蛋白酶消化细胞。
4.用适量的培养基或PBS将细胞悬液转移至离心管中。
5.1,000rpm离心3 min，弃上清。
6.加入PBS后1,000 rpm离心3 min，弃上清。重复本步操作一遍。
7.加入预先配好的1×Annexin V Binding Solution，制成终浓度为1×106 cells/ml的细胞悬液。
8.取100 μl步骤7中的细胞悬液，加入到新的tube中。
9.向细胞悬液中加入5 μl Annexin V,FITC结合物，再加入5 μl的PI Solution。
10.室温下避光培养15 min。
11.加入400 μl 1×Annexin V Binding Solution。
12.流式细胞仪检测：加样到流式细胞仪检测。
荧光显微镜检测：将细胞悬液滴到玻片上，置于显微镜上使用合适的滤光片检测。
*由于消化细胞的过程会对细胞膜的特定部位有损伤，所以一般不用Annexin V,FITC通过流式细胞仪检测贴壁细胞的凋亡。然而，Casiola-Rosen和Van Engelend等人在各自的文献中有报导使用Annexin V通过流式细胞仪成功检测贴壁细胞凋亡的实例。
诱导凋亡的操作步骤
1.制备细胞（Caco-2）悬液（1×106 cells/ml）
将细胞悬液接种到培养皿或者培养板中。
2.在5% CO2培养箱中37℃预培养。
3.加入终浓度为25 μmol/ml的凋亡诱导剂（Cisplatin）
4.37℃培养4 days。 * Cisplatin用于诱导Caco-2 cell凋亡。最佳的诱导条件请根据实验的细胞类型与诱导剂调整。
Annexin V染色操作步骤
1.弃去培养皿或培养板中的上清液。
2.用PBS洗细胞2次。
3.用胰蛋白酶消化细胞。
4.用适量的培养基或PBS将细胞悬液转移至离心管中。
5.1,000rpm离心3 min，弃上清。
6.加入PBS后1,000 rpm离心3 min，弃上清。重复本步操作一遍。
7.加入预先配好的1×Annexin V Binding Solution，制成终浓度为1×106 cells/ml的细胞悬液。
8.取100 μl步骤7中的细胞悬液，加入到新的tube中。
9.向细胞悬液中加入5 μl Annexin V,FITC结合物，再加入5 μl的PI Solution。
10.室温下避光培养15 min。
11.加入400 μl 1×Annexin V Binding Solution。
12.流式细胞仪检测：加样到流式细胞仪检测。
荧光显微镜检测：将细胞悬液滴到玻片上，置于显微镜上使用合适的滤光片检测。
*由于消化细胞的过程会对细胞膜的特定部位有损伤，所以一般不用Annexin V,FITC通过流式细胞仪检测贴壁细胞的凋亡。然而，Casiola-Rosen和Van Engelend等人在各自的文献中有报导使用Annexin V通过流式细胞仪成功检测贴壁细胞凋亡的实例。
注意事项
1.PI有潜在的致癌性，操作时请特别注意并采取必要的防护措施。
2.Annexin V,FITC和PI均对光敏感。所有染色过程和培养过程均需避光。
实验实例 图1. staurosporine诱导Jurkat细胞凋亡的图像
1.PI有潜在的致癌性，操作时请特别注意并采取必要的防护措施。
2.Annexin V,FITC和PI均对光敏感。所有染色过程和培养过程均需避光。
实验实例 图1. staurosporine诱导Jurkat细胞凋亡的图像
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a.staurosporine诱导凋亡的图像 b.对照组（无staurosporine处理）
图2.paclitaxel诱导凋亡后的活细胞数量（FITC/PI 二维点阵图；细胞：MDA-MB-231）
图2.paclitaxel诱导凋亡后的活细胞数量（FITC/PI 二维点阵图；细胞：MDA-MB-231）
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a.参照（无paclitaxel处理） b.Paclitaxel诱导的凋亡
Paclitaxel诱导凋亡组(b)显示早期细胞凋亡区域(Q4)比无凋亡组该区域(a)的细胞数量更多。
处于凋亡晚期的细胞数量也可以被观察到(Q2)。 几乎所有细胞的凋亡情况都可以观测到。
Paclitaxel诱导凋亡组(b)显示早期细胞凋亡区域(Q4)比无凋亡组该区域(a)的细胞数量更多。
处于凋亡晚期的细胞数量也可以被观察到(Q2)。 几乎所有细胞的凋亡情况都可以观测到。
参考文献
1) Casciola-Rosen L, Rosen A, Petri M, Schlissel M, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996, 93(4)1624.
2) van Engeland M, Ramaekers FC, Schutte B, Reutelingsperger CP, Cytometry, 1996, 24(2), 131.
1) Casciola-Rosen L, Rosen A, Petri M, Schlissel M, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996, 93(4)1624.
2) van Engeland M, Ramaekers FC, Schutte B, Reutelingsperger CP, Cytometry, 1996, 24(2), 131.