HieffTM qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus) 英文名称: HieffTM qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus) |
型号:null 产品货号: 11203YB03 |
价格:请致电:010-57128832,18610462672 |
品牌: 中国/美国 试剂级别: 分子生物学级 |
HieffTM qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus) 产品信息 HieffTM qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus)产品描述 HieffTM qPCR SYBR® Green Master Mix(No Rox Plus)是2×浓缩的实时定量PCR扩增的预混合溶液。Mix中含有热启动HieffTM DNA Polymerase,SYBR® Green I,dNTP Mix,Mg2+,Rox 参比染料。使用时,仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量PCR,大大简化操作过程,缩短操作时间,降低污染几率。 本品采用的DNA聚合酶配体可以随温度变化,实时调节DNA聚合酶活性。配方添加了可有效抑制非特异性PCR扩增因子与促进PCR反应扩增效率的因子,使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。 本产品中预先添加了独特配方的高浓度Rox 参比液,用于校正不同孔间的荧光信号误差。 HieffTM qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus)适用机型 本产品中含有用以校正孔与孔之间产生的荧光信号误差的高浓度Rox Reference Dye,适用于以下荧光定量PCR仪: 运输与保存方式 冰袋运输,-20℃避光储存,有效期1年。 尽量避免反复冻融,如每次使用量较少,推荐小份分装使用。 HieffTM qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus)操作流程 【注1】:由于本品检测灵敏度极高,即使空气中微量的DNA气溶胶都可以引起污染,进而导致实验失败。因此反应体系配制时请于超净工作台内进行,配制过程中请使用干净灭菌枪头、反应管,条件容许的实验室推荐使用专用的移液枪,避免交叉污染。推荐使用带滤芯的枪头。 【注2】:由于本品中含有荧光染料SYBR® Green I,因此无论保存还是配置反应体系时都应该尽量避免强光照射。 1.使用前务必充分混匀Mix,混匀时避免剧烈震荡以免产生过多气泡。Mix轻微离心后即可使用。 2.qPCR反应体系配制* 【*】:反应体系中各成分的量可根据以下原则自行调整: a)反应体系中引物浓度一般在0.1-1.0 μM之间,通常引物终浓度为0.2 μM扩增效果较好; b)扩增产物长度请选择在100 bp-300 bp范围内,尤其推荐100 bp-150 bp之间; c)模板参照体系:1µg RNA的反转录产物需要稀释10-20倍后再进行使用,以减轻RNA对PCR扩增的抑制效应。 d)推荐您使用20μl 或者50 μl反应体系,反应体系适合,才足以保证目的基因扩增的有效性和重复性。 3.PCR 反应条件 本产品可以用三步法进行,也可以用两步法程序进行PCR扩增反应。 【三步法程序】
【两步法程序】 【注】:a:预变性时间根据自己模板和引物的情况可适当缩短至1min—2min。 b:引物退火温度和时间,请根据引物和目的基因的实际情况自行调整。 c:2步法无法扩增的基因,建议采用3步法扩增。 d:熔解曲线采集程序可根据您使用的Real Time PCR仪自行调整,通常情况下使用仪器默认程序即可。 4.分析。反应结束后确认Real Time PCR的扩增曲线及熔解曲线,进行标准曲线制作等。首次实验需要用琼脂糖凝胶电泳确认PCR扩增产物的特异性。 1)对荧光定量而言,Ct值落在20-28之间定量最为准确。如果Ct值太小,请稀释模板后重新进行试验;Ct值大于35时,Real Time PCR检测无效,目标基因无表达;当Ct值介于32-35之间时,需要至少三个重复才能判断目标基因是否表达。 2)如果反应特异性好,无非特异性扩增产物产生,无引物高级结构,则熔解曲线应该是单峰曲线,此时定量结果有效;若熔解曲线出现显著多峰,则定量结果无效,请优化条件重新进行定量实验。引物设计不合理而导致的引物二聚体同样会影响实验结果的判定。 3)使用本品进行绝对定量需自行绘制标准曲线;进行相对定量可根据下述公式计算目标基因表达情况: 设定CtA1为1号样本目标基因Ct值,CtB1为1号样本内参基因Ct值;CtA2为2号样本目标基因Ct值,CtB2为2号样本内参基因Ct值,则1号样本和2号样本目标基因表达水平比值可粗略计算为(2-△△Ct法): △△Ct =(CtA2-CtB2)-(CtA1-CtB1)= X,则2号样本内目标基因的表达水平为1号样本内的2 -X 倍。 【注】:上述计算方法是假定扩增效率为100% (每个循环过后产物量为前一循环产物量乘以2),如实际扩增效率不为100%,需根据实际扩增效率修改计算公式。例如:目标基因和内参基因扩增效率为0.90,则计算公式应该修正为(1+0.90) -△△Ct。 引物设计指南 1)扩增产物长度100bp-150bp为佳。重要! 2)引物长度17 bp-25 bp最好。太短的引物容易导致扩增效率降低,太长的引物会导致引物高级结构出现几率增加; 3)引物的3’端应尽量避免高GC或高TA含量区域; 4)引物3’端最后一个碱基最好为G或者C,避免使用T; 5)正向引物和反向引物的Tm值最好相差不要超过1℃。Tm值调整至60℃-65℃为佳。(引物Tm值推荐使用Primer 5进行计算)。 6)引物的GC含量控制在40%-60%之间,最佳为45%-55%; 7)引物A、G、C、T整体分布尽量要均匀,避免使用GC或者TA含量高的区域,尤其是3’端,必须避开GC含量不均匀的区域; 8)尽量避开T/C或者A/G的连续结构; 9)避开引物内部或者两条引物之间有3个碱基以上的互补序列,二条引物之间的3’端避开有2个碱基以上的互补序列; 10)引物设计完毕使用NCBI BLAST功能检索核对引物特异性,以避免非特异性扩增产生。 qPCR反应有效性确认标准 1)线性关系以及扩增效率确认: 标准曲线相关系数(R2)>0.98 标准曲线斜率介于 -3~-3.5之间 PCR扩增效率(E)介于0.9~1.2之间 2)重复性确认: 重复管之间的STD<0.2 3)特异性确认:
扩增产物融解曲线无明显非特异性扩增产物/引物二聚体杂峰(必要时请进行琼脂糖电泳进行确认)。 |